Ключові слова
нейтрофіли
фагоцитоз
реактивні форми кисню
Як цитувати
Анотація
У даній статті розглянуті фізичні принципи методу лазерної проточної цитометрії й показані можливості даного методу для медичної й біологічної науки. Метод ефективний при вирішенні важливих завдань в оцінці фагоцитарного процесу. Вивчення показників фагоцитозу має значення в комплексному аналізі діагностики як первинних імунодефіцитних станів, так і вторинних імунодефіцитних станів – часто рецидивні запальні процеси, схильність до післяопераційних ускладнень.Посилання
. Mykytyuk O. Yu. (2015). Flow cytometry: physical bases and practical application in medicine and biology, Bulletin of biological and medical problems, Issue. 2(1):214–217.[in Russian].
Gordon S. (2016). Phagocytosis: an immunobiologic process. 44(3):463–475. DOI:10.1016/j.immuni.2016.02.026
Walker (2017). LSK. EFIS Lecture: Understanding the CTLA-4 checkpoint in the maintenance ofimmune homeostasis. Immunol Lett. 184:43–50. DOI: 10.1016/j.imlet.2017.02.007
Jin Q., Jiang L., Chen Q., Li X., Xu Y., Sun X., Zhao Z., Wei L. (2018). Rapid flow cytometry-based assay for the evaluation of γδ T cellmediated cytotoxicity. Mol Med Rep 17(3):3555–3562. DOI:10.3892.mmr.2017.8281.
Rőszer T. (2015). Understanding the mysterious M2 macrophage through activation markers and effector mechanisms, Mediators Inflamm, 2015:816–460.DOI: 10.1155/2015/816460.
Castelo–Branco С. (2014). The immune system and aging: a review, Gynecol. Endocrinol,; 30(1):16–22. DOI: 10.3109/09513590.2013.852531.
Kandarian F., Sunga G. M., Arango-Saenz D., Rossetti M. (2017). A flow cytometry–based cytotoxicity assay for the assessment of human NK cell activity. J. Vis. Exp. (126), DOI:10.3791/56191.
Jeffery H. C., Jeffery L. E., Lutz P., Corrigan M., Webb G. J., Hirschfield G. M., et al. (2017). Low-dose interleukin-2 promotes STAT-5 phosphorylation, Treg survival and CTLA-4-dependent function in autoimmune liver diseases. Clin. Exp. Immunol. 188:394–411. DOI:10.1111/cei.12940.
Woods D. M., Ramakrishnan R., Sodré A. L., Berglund A., Weber J. (2017). PD-1 blockade induces phosphorylated STAT3 and results in an increase of T regs with reduced suppressive function. J. Immunol. 198:56–57.
Meindl C., Öhlinger K.,Ober J., Roblegg E., Fröhlich E. (2017). Comparison of fluorescence-based methods to determine nanoparticle uptake by phagocytes and non-phagocytic cells in vitro J. Tox. 378: 25–36. DOI: 10.1016/j.tox.2017.01.001
Davies L. C, Rosas M., Jenkins S. J., Liao C. T, Scurr M. J., Brombacher F. (2013). Distinct bone marrow–derived and tissue-resident macrophage lineages proliferate at key stages during inflammation. Nat Commun 4:1886. DOI: 10.1038/ncomms2877.
Davies L. C, Rosas M., Smith P. J., Fraser D. J., Jones S. A., Taylor P. R. (2011). A quantifiable proliferative burst of tissue macrophages restores homeostatic macrophage populations after acute inflammation. Eur. J. Immunol. 1(8):2155–64. DOI: 10.1002/eji.201141817.
Soehnlein O, Lindbom L. (2010). Phagocyte partnership during the onset and resolution of inflammation. Nat Rev Immunol. 10(6):427–39. DOI: 10.1038/nri2779.
Dovhyy R. S., Skivka L. M. (2017). Functional state of alveolar macrophages and neutrophils of bone marrow of mice of various ages. Journal of Biology and Medicine, Issue 1(139). 79–84.[in Russian].
Woo J. M. (2012). Curcumin protects retinal pigment epithelial cells against oxidative stress via induction of heme oxygenase-1 expression and reduction of reactive oxygen , Mol Vis. 18:901–8.